domingo, 4 de enero de 2009

PRACTICA #8 DIFERENCIACIÓN DE PARÁSITOS A TRAVÉS DE DE PHYLUM GENERO Y ESPECIE

OBJETIVO: identificar y diferenciar un parásito.

MATERIAL

 Cajas de petri
 Portaobjetos
 Hojas de disección
 Charola
 Microscopio
 Estereoscopio
 Cubre bocas
 Guantes
 Pinzas
 Regla
 Lugol
 Parásitos


MÉTODO 1
1. Tomar un parásito
2. diseccionar observar la parte anterior y parte posterior en el estereoscopio
3. Observar en el microscopio
4. Clasificarlo

Resultado dipylidium


Proglotido de largo 1cm por 2mm de ancho. Grueso 2 mm


DIPYLIDIUM
Es un céstodo que infecta los perros y gatos, es transmitido al hombre principalmente a los niños menores de 5 años cuando son lamidos por sus mascotas y se tragan accidentalmente las pulgas de éstos. El adulto puede llegar a medir hasta 15 cm. de largo
El ciclo vital involucra las pulgas de los gatos y los perros donde se produce una fase larvaria del parásito que es infectante, llamada larva cisticercoide; cuando las pulgas infectadas son trituradas por los dientes de los niños cuando son lamidos por sus mascotas, la larva se libera para trasladarse al intestino y luego convertirse en adulto.
Se diagnostica mediante la observación directa de las heces. Observaremos la presencia de los segmentos terminales del parásito (proglotides), y éstos van a tener una morfología característica de granos de arroz ó de semilla de calabaza.
También se podría diagnosticar al hacer un examen microscópico en fresco de las heces, o mediante técnicas de flotación y sedimentación. Los huevos encontrados pueden estar aislados o bien en paquetes recubiertos por una membrana hialina, conteniendo hasta 25 huevos incoloros con oncosferas de seis ganchos.
Praziquantel es el tratamiento más efectivo en la actualidad.
La manera de evitar esta infección es eliminando el hospedador intermediario (pulgas) con productos específicos (insecticidas), y desparasitando a los animales infectados cada 3 meses con Praziquantel.
MORFOLOGIA
El adulto mide mas o menos 15 cms. de largo y presenta un escólex con cuatro ventosas y un rostellum largo y retráctil
Los proglótides presentan dos poros gentitales uno de cado lado con dos ovarios.
Los huevos se pueden presentar en paquetes recubiertos por una membrana, estos pueden contener hasta 25 huevos

Practica #7 disección de un ave para diagnostico de nematodos en órganos anatómicoS

Material:

1 charola de disección,

1 estuche de disección

10 porta objetos

1 gotero

1 Varilla de vidrio

Palillos de madera

Microscopio

Coladera

Ave

Soluciones

Glicerina

Lugol

Alcohol

Método 1 disección del ave

  1. Mojar el ave completamente
  2. Sacrificar ave
  3. Diseccionar desde la traquea retirando piel
  4. Observar cada zona anatómica y órganos
  5. Tomar muestra en portaobjetos de mucosas

método 2 muestra de sangre

  1. La sangre es centrifugada a 1500 rpm de 5 a 10 min
  2. Se obtiene el Suero sanguíneo
  3. Colocar 2 gotas en el portaobjetos (observar sin teñir)
  4. Colocar 1 gota en portaobjetos y teñir con una gota de azul de metileno o violeta de gencianas cristal violeta.

PRACTICA #6 DIAGNOSTICO DE NEMATODOS EN CANINOS

Método de flotación

Objetivo: Diagnosticar huevos de Nematodos y cestodos a través de la diferencia de peso específico del huevo por la solución a utilizar.

MATERIAL:
2 vasos de precipitados
1 tubo para centrífuga
1 pipeta pasteur
1 espátula
1 coladera
1 agitador
1 probeta
5-10 portaobjetos
1 cubre bocas
guantes
Soluciones
1 microscopio
1 centrifugadora.

SOLUCIONES
Lugol
Solución Glucosada
Solución de Sulfato de Zinc

SOLUCION GLUCOSADA PROCEDIMIENTO

1) Pesar el vaso de pp
2) Agregar 2 gramos de heces
3) Agregar 28 ml de solución glucosada
4) Homogenizar
5) filtrar
6) Agregar tubo de 10ml
7) Centrifugar a 1500 rpm. por 15 minutos
8) Colocar con el gotero 3 gotas de la suspensión flotante
9) observar al 10x



METODO DE FLOTACION: SOLUCION SULFATO DE ZINC

1) Pesar 1 gramo de heces
2) Agregar 10 ml de agua
3) homogenizar
4) Agregar 3-4 gotas de sulfato de zinc
5) centrifugar 2000 rpm por 1 minuto
6) Decantar el exceso de agua
7) Repetir pasos 2, 3, 4, 5 y 6
8) Repetir pasos 2, 3, 4, 5 y 6
9) observar por microscopio al 10x

DIAGNOSTICO

No se encontró presencia de larvas y/o huevecillos de Nematodos en las heces de perro.

PRACTICA #5 DIAGNOSTICO DE NEMATODOS EN PORCINOS

Para glucosada flotación

MATERIAL:
2 vasos de precipitados
1 tubo para centrífuga
1 pipeta pasteur
1 espátula
1 coladera
1 agitador
1 probeta
5-10 portaobjetos
1 cubre bocas
guantes
Soluciones
1 microscopio
1 centrifugadora.

SOLUCIONES
Lugol
Solución Glucosada
Solución de Sulfato de Zinc


SOLUCION GLUCOSADA PROCEDIMIENTO

1) Pesar el vaso de pp
2) Agregar 2 gramos de heces
3) Agregar 28 ml de solución glucosada
4) Homogenizar
5) filtrar
6) Agregar tubo de 10ml
7) Centrifugar a 1500 rpm. por 15 minutos
8) Colocar con el gotero 3 gotas de la suspensión flotante
9) observar al 10x


METODO DE FLOTACION: SOLUCION SULFATO DE ZINC

1) Pesar 1 gramo de heces
2) Agregar 10 ml de agua
3) homogenizar
4) Agregar 3-4 gotas de sulfato de zinc
5) centrifugar 2000 rpm por 1 minuto
6) Decantar el exceso de agua
7) Repetir pasos 2, 3, 4, 5 y 6
8) Repetir pasos 2, 3, 4, 5 y 6
9) observar por microscopio al 10x
DIAGNOSTICO

No se encontró presencia de larvas y/o huevecillos de nematodos en las heces de porcino.

PRACTICA #5 DIAGNOSTICO DE NEMATODOS EN PORCINOS

Para glucosada flotación

MATERIAL:
2 vasos de precipitados
1 tubo para centrífuga
1 pipeta pasteur
1 espátula
1 coladera
1 agitador
1 probeta
5-10 portaobjetos
1 cubre bocas
guantes
Soluciones
1 microscopio
1 centrifugadora.

SOLUCIONES
Lugol
Solución Glucosada
Solución de Sulfato de Zinc


SOLUCION GLUCOSADA PROCEDIMIENTO

1) Pesar el vaso de pp
2) Agregar 2 gramos de heces
3) Agregar 28 ml de solución glucosada
4) Homogenizar
5) filtrar
6) Agregar tubo de 10ml
7) Centrifugar a 1500 rpm. por 15 minutos
8) Colocar con el gotero 3 gotas de la suspensión flotante
9) observar al 10x


METODO DE FLOTACION: SOLUCION SULFATO DE ZINC

1) Pesar 1 gramo de heces
2) Agregar 10 ml de agua
3) homogenizar
4) Agregar 3-4 gotas de sulfato de zinc
5) centrifugar 2000 rpm por 1 minuto
6) Decantar el exceso de agua
7) Repetir pasos 2, 3, 4, 5 y 6
8) Repetir pasos 2, 3, 4, 5 y 6
9) observar por microscopio al 10x
DIAGNOSTICO

No se encontró presencia de larvas y/o huevecillos de nematodos en las heces de porcino.

PRACTICA #4 IDENTIFICACIÓN DE HUEVOS DE TREMATODOS Y LARVAS DE VERMAXSE

Objetivo

Aprender la identificación de huevos y larvas en eses de Equinos

Introducción

El Strongylus vulgaris es un nematodo responsable de producir arteritis parasitaria, dado que sus larvas migran a través de las arterias dañando las paredes de las mismas. En consecuencia pueden producirse coágulos, trombos y aneurismas, comprometiendo la irrigación. Las arterias más afectadas son las mesentéricas, iliacas y en algunos casos las espermáticas. Los problemas ocasionados por las larvas son variados en función del tamaño de los aneurismas y su localización. En los casos más leves se observa cansancio, disminución del rendimiento y cólicos más o menos intensos. En los casos más graves puede ocurrir la rotura de los vasos, hemorragia interna y muerte.

Triodontophorus poseen geotropismo negativo (emigran a l

as hojas de los pastos) y fototropismo positivo (son repelidas cuando la luz es intensa). La infestación se produce cuando se ingiere la larva III.

Entran en venas pulmonares pasan al corazón izquierdo y son lanzados a la aorta y al sistema arterial para detenerse en el mesentérico anterior, donde se fijan al endotelio arterial, y permanecen por 5 meses en donde realizan 2 mudas.

Cuando las larvas alcanzan de 7 a 10 mm. Se desprenden de la pared arterial y son arrastradas por la corriente sanguínea que las lleva principalmente al ciego y al colon.

En el intestino permanecen en la pared intestinal un mes formando nódu

los (submucosos).

Por último las larvas salen de los nódulos para pasar a la luz del ciego y colon donde se hacen adultos y se fijan a la mucosa.

Procedimiento

1. Se mezclan 50 a 10 g. de heces en un vaso de precipitados de 100 ml con suero fisiológico salino (o agua)

2. Se eliminan las sustancias

3. Haciendo pasar la mezcla por un colador se deja repasar la suspensión durante media hora (30min) para que se sedimenté.

4. Mediante decantación y agitación con liquido nuevo se repite este proceso varias veces esta que el sobrante queda en gran parte transparente o se vuelva totalmente transparente y se formen cúmulos trasparentes.

El examen sobre la presencia de huevos de fasiola se encuentra

por el siguiente procedimiento:

1. La cantidad pesada de material fecal (10 g.) se pone en remojo con un poco de agua se añade una ves trascurrido 1 a 2 hrs. Unos 30 mg. de agua se homogeniza.

2. La sustancia gruesa (toda la solución) color

3. Lo que se homogeniza se decanta 3 veces

4. Es sedimento se debe filtrar mas de 200 micras

5. La solución se lava y se obtiene una suspensión de 10 a 15ml y se coloca en el tubo

6. Tomando del tubo 2ml de sedimentación con una jeringa de insulina

REPORTE FISICO

Nombre: La de Tecomán

Color Alazán

Heces

Color: Verde olivo

Olor: Normal

Consistencia: acuosa

Huevos de strongylus vulgaris

Pudimos observar huevecillos de strongylus vulgaris así como de Triodontophorus.

Conclusiones

Son parásitos de la flora intestinal pero las concentraciones que encontramos en las heces fecales indican un problema leve de parasitismo.

miércoles, 10 de diciembre de 2008

PRACTICA # 2


RECOLECCION Y ENVIO DE MUESTRAS AL LABORATORIO

OBEJTIVO:

Aprender a recolectar muestras, para enviarlas al laboratorio y posteriormente estudiarlas y dar un diagnostico.

MATERIAL:

1 guante de palpación

Libreta

Pluma

Botas de hule

PROCEDIMIENTO:

1.- ponerse el guante correctamente

2.-introducir el dedo medio en el ano para estimular la pared de la cavidad abdominal

3.- esperar a que el animal se relaje y deseche heces fecales.

4.- quitarse el guante con las heces y amarrarlo

5.- tomar los siguientes datos:

  • Color
  • Olor
  • Consistencia
  • Presencia de larvas

6.- llevar la muestra al cuarto frío en el laboratorio, guardarla y utilizarla después.

CONCLUSIONES:

Esta practica me pareció importante porque yo no sabia como se tomaban las muestras ni lo que se hacia después de recolectarla.

Es importante ya que si no se siguen los pasos puede echarse a perder la muestra y habría que volver a repetirse.

martes, 25 de noviembre de 2008

Criterios de Juzgamiento y belleza canina

  • cabeza
  • Frente
  • Tórax
  • Espalda
  • Trasero
  • Cola
  • Sustancia
  • Actitud
  • Movimiento
  • Salud
El frente de un perro debe estar con las partas anteriores rectas y no cascorvas, La caja torácica debe estar por debajo del codo, la espalda estar de bajada simulando una resbaladilla. El trasero y las patas posteriores deben estar bien acomodadas y rectas. La cola con la inserción alta. La sustancia se refiere a huesos anchos (poder). La actitud del perro debe ser atenta, cola arriba y orejas rectas, que demuestre valor. Movimiento con pasos grandes y desplazamiento armonioso. Y por ultimo el perro debe estar en buen estado y contar con buena salud. Salud es belleza.

Clasificación F.C.I.

  • Grupo I Perros de pastoreo
  • Grupo II Perros pinscher, schnauzer y moloso
  • Grupo III Terrier
  • Grupo IV Teckles
  • Grupo V primitivos
  • Grupo VI Sabuesos
  • Grupo VII Perros de muestra
  • Grupo VIII Cobradores
  • Grupo IX Perros de Compañía
  • Grupo X Lebreles

Categorías

  • Cachorro A (no oficial) 3-6 meses
  • Cachorro B 6-9 meses
  • Cachorro C 9-15 meses
  • Joven 15-18 meses
  • Libre y Trabajo 18 meses en adelante
  • Especiales y perros con titulo (compiten por el mejor de la raza)

Manejador

Debe contar con:

  • Buena actitud
  • Buena comunicación con el perro
  • Buena presentación
  • Buen arreglo del perro

miércoles, 24 de septiembre de 2008

Practica 3 DIAGNOSTICO DE HUEVOS

DIAGNOSTICO DE HUEVOS (De nematodos, cestodos y protozoarios) por método directo con sal.

Método de flotación con solución:
1) Glucosa
2) Sulfato de Zinc

MATERIALES

2 vasos de pp de 100 mil.
1 coladera
1 espátula
1 tubo/centrifuga
1 varilla de vidrio
1 probeta
1 pipeta o gotero
8 portaobjetos
Microscopio
Balanza
Cubre bocas
Guantes

SOLUCIONES

Lugol
Solución Salina
Solución Glucosada
Solución de Sulfato de Zinc

DESARROLLO DE LA PRACTICA

Hacer examen físico de las heces

COLOR: verde olivo
OLOR: normal
CONSISTENCIA: pastosa
NUMERO: 84

METODO DIRECTO.

Se toma una muestra y se coloca en el portaobjetos. Se agrega de 2 a 3 gotas de Solución Salina. Mas una gota de Lugol. Se procede homogenizar y se observa en el microscopio.


METODO DE FLOTACIÒN: SOLUCION GLUCOSADA

1) Pesar el vaso de pp
2) Agregar 2 gramos de heces
3) Agregar 28 ml de solución glucosada
4) Homogenizar
5) filtrar
6) Agregar tubo de 10ml
7) Centrifugar a 1500 rpm. por 15 minutos
8) Colocar con el gotero 3 gotas de la suspensión flotante
9) observar al 10x


METODO DE FLOTACION: SOLUCION SULFATO DE ZINC

1) Pesar 1 gramo de heces
2) Agregar 10 ml de agua
3) homogenizar
4) Agregar 3-4 gotas de sulfato de zinc
5) centrifugar 2000 rpm por 1 minuto
6) Decantar el exceso de agua
7) Repetir pasos 2, 3, 4, 5 y 6
8) Repetir pasos 2, 3, 4, 5 y 6
9) observar por microscopio al 10x

DIAGNOSTICO

No se encontró presencia de larvas y/o huevecillos.

lunes, 15 de septiembre de 2008

martes, 9 de septiembre de 2008

Practica #1 Preparación de soluciones

Preparación de soluciones para el diagnostico de huevos de: Nematodos, Cestodos y protozoo.

Objetivo: Saber preparar la solución glucosada con el objeto que el estudiante pueda utilizarla en el diagnostico parasicológico, ya que la solución glucosada por diferencia de peso especifico entre el peso del huevecillo y la solución estos, tienden a flotar sobre la superficie de la solución glucosada.

Pesos específicos que van de 1,000-1,200 y trematodos solo en pesos arriba de 1,300.

SOLUCIÓN DE AZUCAR

Se verán fases de huevecillos.

Procedimiento:






  1. pesar 1,250 kg de azúcar

  2. prender el plato y cuando este caliente, colocar el vaso de precipitado con 500 ml de agua.

  3. Se calienta el agua con inicio de 100 grados en ebullición trata de subir y bajar la temperatura según convenga.

  4. Se agrega el azúcar poco a poco.

  5. Se apaga el plato y se deja enfriar.

  6. agrega a la solución 3 gotas de formol al 5%.


La solución va en un frasco color ámbar.







FROTIS DIRECTO AL EXCREMENTO

Se tomo una muestra con un palillo del excremento de un perro daschund de 6 años y medio (Ozzy). Se coloco en el porta objetos junto con dos gotas de agua destilada y se homogenizo.

En el microscopio a 10x

Se observaron dendritas por lo que es Negativo a
huevecillos.

lunes, 1 de septiembre de 2008

Potencial del Hidrogeno

Concentración de iones de hidrogeno presentes en una sustancia. En el cuerpo los riñones y los pulmones regulan el estado Básico/acido. Los riñones compensan la perdida de cloruros mediante la conservación del Bicarbonato


Respuesta a los cambios de pH.

Amortiguadores: Son la primera línea de defensa pero solo impiden los cambios de pH, NO corrigen el problema. El pH se corrige realizando ajustes en la ventilación y por cambios en la función renal.


Control de pH.


La sangre toma de los tejidos de dióxido de carbono, formando ácido carbónico que se disocia con iones de Hidrogeno bicarbonato

El sistema respiratorio responde a los cambios de pH modificando la velocidad de sustracción de CO2 y disminuye la concentración de acido en la sangre.

La enzima anhidrasa carbónica cataliza la deshidratación del acido carbónico.

Los pulmones eliminan un acido volátil, los riñones excretan ácidos no volátiles por la secreción tubular de H+

De manera general se da através de un intercambio de Na+ intraluminal por H+ intracelular. Esta es la vía primaria y se dan el túbulo proximal.

Los riñones llevan a cabo el proceso de amonio génesis en las células de los túbulos proximales. En ellas la glutamina se metaboliza en amonio y bicarbonato. Incrementándose la eliminación de H.

Los pulmones eliminan CO2 y elevan el pH. lógicamente la sangre es mas acida que la sangre arterial. En caso de hiperventilación se eleva el pH y en hipo ventilación el pH disminuye.

miércoles, 27 de agosto de 2008

Homeostasis

Mecanismos fisiológicos mediante los cuales el organismo mantiene la condición de estabilidad. Es el proceso que permite al organismo mantener el funcionamiento normal de los procesos celulares.
Las diferentes disposiciones fisiológicas que sirven para restaurar el estado normal, una vez que ha sido trastornado.

¿Quién mantiene la homeostasis?
Se mantiene através de órganos y sistemas que promueven:

1) El transporte de oxigeno y de nutrientes en el torrente sanguíneo.
2) El equilibrio ácido-básico.
3) Termorregulación (radiación, conducción, convección y evaporación)